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由2.2.1可知,重組蕃E.coliBL21(DE3)-pET-28a(+)-gly5m在25℃誘導(dǎo)時(shí)酶活最高,故將重組菌在25℃分別誘導(dǎo)4、6、8、10h。離心得到胞外粗酶液,菌體超聲破碎后得到胞內(nèi)粗酶液,結(jié)果見圖4(a)。重組菌在25℃誘導(dǎo)4h后,重組β-葡聚糖水解酶Gly5m總酶活達(dá)到最高,為1086U/mL,且此時(shí)胞外酶活也達(dá)到最高,為888U/mL。此外,重組菌在誘導(dǎo)時(shí)間超過4h后,總酶活開始下降,說明Glv5m不穩(wěn)定,開始降解。
由2.2.2可知,重組菌E.coliBL21(DE3)-pET-28a(+)-bt3312在25℃誘導(dǎo)時(shí)酶活最高,故將重組菌在25℃分別誘導(dǎo)4、6、8、10h。離心得到胞外粗酶液,菌體超聲破碎后得到胞內(nèi)粗酶液,結(jié)果見圖4(b)。重組菌在30℃誘導(dǎo)8h后,總酶活達(dá)到最高,為2355U/mL,且此時(shí)胞內(nèi)、胞外酶活均達(dá)到最高,分別為917、1438U/mL。此外,重組菌在誘導(dǎo)時(shí)間超過8h后,酶活開始下降,說明BT3312也不穩(wěn)定。
以未經(jīng)重組β-葡聚糖水解酶水解的酵母葡聚糖為對(duì)照,對(duì)3個(gè)實(shí)驗(yàn)組水解產(chǎn)物進(jìn)行HPLC分析,結(jié)果見圖5。兩種重組酶都有水解酵母葡聚糖的能力,且兩種重組酶可以同時(shí)添加共同發(fā)揮作用。比較3種水解方式所得產(chǎn)物發(fā)現(xiàn),經(jīng)BT3312水解后,所得產(chǎn)物相對(duì)分子質(zhì)量最大,推測(cè)原因可能是BT3312專一性水解β-1,6-糖苷鍵,而在酵母β-葡聚糖中,β-1,6-葡聚糖少,占10%~15%,因此通過BT3312水解后,所得產(chǎn)物中大部分的β-葡聚糖沒有水解,故相對(duì)分子質(zhì)量大。反之,Glv5m主要水解β-l,3-糖苷鍵,在酵母β-葡聚糖中,β-1,3-葡聚糖多,故經(jīng)Glv5m水解后,所得產(chǎn)物相對(duì)分子質(zhì)量更小。此外,當(dāng)BT3312和Glv5m共同水解時(shí),水解最徹底,剩余的底物最少,推測(cè)原因是酵母β-葡聚糖中同時(shí)含有β-l,3-糖苷鍵和β-1,6-糖苷鍵,而β-l,6-糖苷鍵的存在可能會(huì)影響β-1,3-葡聚糖水解酶Gly5m發(fā)揮作用,故當(dāng)β-l,6-葡聚糖水解酶BT3312水解掉β-1,6-糖苷鍵后,Gly5m才能更好地發(fā)揮水解作用,使水解更加徹底。
酵母β-葡聚糖經(jīng)過Gly5m和BT3312單獨(dú)或共同水解后,溶解率均有增加,結(jié)果見圖6。添加相同酶量水解時(shí),同時(shí)添加Glv5m和BT3312,水解產(chǎn)物溶解率增加量最多,從12%增加到50%,水溶性酵母葡聚糖質(zhì)量濃度為12.5g/L。當(dāng)Gly5m和BT3312共同水解時(shí),酵母葡聚糖水解最徹底,前后結(jié)果一致。當(dāng)只用Glv5m水解時(shí),酵母葡聚糖溶解率提高了2.6倍,水溶性酵母葡聚糖質(zhì)量濃度為11g/L;當(dāng)只用BT3312水解時(shí),酵母葡聚糖溶解率提高了2.4倍。水溶性酵母葡聚糖質(zhì)量濃度為10.25g/L。
酵母β-葡聚糖廣泛應(yīng)用于醫(yī)療、保健食品和化妝品行業(yè)中,但因?yàn)槠渌蝗苄?,限制了它的?yīng)用。作者在E.coli中表達(dá)了兩種不同的酵母β-葡聚糖水解酶,兩種酶不僅都有水解酵母β-葡聚糖的能力,而且可以同時(shí)發(fā)揮作用。通過兩種不同的酵母β-葡聚糖水解酶的水解作用,使得酵母β-葡聚糖溶解性增加,且結(jié)構(gòu)和活性不被破壞。但是,兩種水解酶在E.coli中表達(dá)量低,SDS-PAGE檢測(cè)分析中沒有明顯條帶,為進(jìn)一步提高表達(dá)量和酶活,可通過優(yōu)化培養(yǎng)基、培養(yǎng)條件、構(gòu)建不同啟動(dòng)子的表達(dá)系統(tǒng)等進(jìn)行嘗試表達(dá)。此外,作者對(duì)兩種酵母β-葡聚糖水解酶共同水解酵母葡聚糖以提高其水溶性只進(jìn)行了初步探索,為進(jìn)一步提高水解效率,可以優(yōu)化水解條件、添加的酶活濃度以及兩種水解酶的比例。
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采用天根細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒提取細(xì)菌基因組,具體方法和步驟參照試劑盒說明書。所提取的菌株DNA利用核酸蛋白分析儀和Qubit熒光定量測(cè)定儀檢測(cè)基因組DNA的純度和濃度,并送北京諾禾致源科技股份有限公司進(jìn)行全基因組測(cè)序。經(jīng)電泳檢測(cè)合格的DNA樣品用超聲波破碎儀隨機(jī)打斷成長(zhǎng)度約為350bp的片段,經(jīng)末端修復(fù)、加A尾、加測(cè)序接頭、純化、PCR擴(kuò)增等步驟完成文庫(kù)制備。
了解更多> >本文以燕麥β-葡聚糖為原料,利用疏水性飽和脂肪酸—硬脂酸對(duì)其進(jìn)行酯化改性,得到兩親性燕麥β-葡聚糖酯。通過探究硬脂酸?;溥蚧罨旱奶砑恿俊⒎磻?yīng)溫度以及反應(yīng)時(shí)間對(duì)酯化反應(yīng)產(chǎn)物取代度的影響,得出當(dāng)脂酸酰基咪唑活化液添加量6.50mL,反應(yīng)溫度90℃,反應(yīng)時(shí)間5.0h時(shí),酯化反應(yīng)產(chǎn)物取代度最大,為0.133。采用傅里葉紅外光譜及氫核磁共振分析技術(shù)對(duì)所得產(chǎn)物進(jìn)行表征,所得結(jié)果均證明此方法可成功制備兩親性燕麥β-葡聚糖酯。
了解更多> >本文以燕麥β-葡聚糖為原料,利用疏水性飽和脂肪酸—硬脂酸對(duì)其進(jìn)行酯化改性,得到兩親性燕麥β-葡聚糖酯。通過探究硬脂酸?;溥蚧罨旱奶砑恿?、反應(yīng)溫度以及反應(yīng)時(shí)間對(duì)酯化反應(yīng)產(chǎn)物取代度的影響,得出當(dāng)脂酸?;溥蚧罨禾砑恿?.50mL,反應(yīng)溫度90℃,反應(yīng)時(shí)間5.0h時(shí),酯化反應(yīng)產(chǎn)物取代度最大,為0.133。采用傅里葉紅外光譜及氫核磁共振分析技術(shù)對(duì)所得產(chǎn)物進(jìn)行表征,所得結(jié)果均證明此方法可成功制備兩親性燕麥β-葡聚糖酯。
了解更多> >本文以燕麥β-葡聚糖為原料,利用疏水性飽和脂肪酸—硬脂酸對(duì)其進(jìn)行酯化改性,得到兩親性燕麥β-葡聚糖酯。通過探究硬脂酸?;溥蚧罨旱奶砑恿俊⒎磻?yīng)溫度以及反應(yīng)時(shí)間對(duì)酯化反應(yīng)產(chǎn)物取代度的影響,得出當(dāng)脂酸酰基咪唑活化液添加量6.50mL,反應(yīng)溫度90℃,反應(yīng)時(shí)間5.0h時(shí),酯化反應(yīng)產(chǎn)物取代度最大,為0.133。采用傅里葉紅外光譜及氫核磁共振分析技術(shù)對(duì)所得產(chǎn)物進(jìn)行表征,所得結(jié)果均證明此方法可成功制備兩親性燕麥β-葡聚糖酯。
了解更多> >根據(jù)《中國(guó)食品藥品企業(yè)質(zhì)量安全促進(jìn)會(huì)團(tuán)體標(biāo)準(zhǔn)管理辦法(試行)》的相關(guān)規(guī)定,中國(guó)食品藥品企業(yè)質(zhì)量安全促進(jìn)會(huì)批準(zhǔn)發(fā)布《燕麥麩皮》團(tuán)體標(biāo)準(zhǔn),標(biāo)準(zhǔn)編號(hào)為T/FDSA017—2021,自2021年10月1日起實(shí)施。
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